免疫电镜技术组织的固定

    Singer于1959年首先建立了用电子密度较高的铁蛋白(ferritin)标记抗体的方法，可对细胞表面抗原进行超微结构定位。该技术为免疫电镜技术的发展奠定了基础。Nakane与Pierce于1968年成功建立了免疫酶标记电镜技术，使细胞内抗原的超微结构定位成为可能。Faulk和Taylor于1971年提出用胶体金(colloidalgold)标记抗体，并首先用于免疫电镜研究，由此大大促进了免疫电镜技术的发展。

    免疫电镜技术的取材要求更迅速更精细。与电镜酶细胞化学标本制备相似，既要求保存良好的细胞超微结构，同时又要保持组织细胞的抗原性，但是，两者间往往处于矛盾之中，也就是说，强固定剂虽有利于超微结构的保存，但易导致抗原性明显减弱，所以免疫电镜的组织标本固定不仅要考虑超微结构的保存，亦应尽力保持其抗原性，故应选用较温和的固定剂。常用固定剂有过碘酸―赖氨酸―多聚甲醛(periodate-lysine-paraformaldehyde，PLP)液和2％多聚甲醛―0．5％戊二醛混合液。在包埋前染色中，PLP较为常用，该固定液较适用于含糖类丰富的组织，对超微结构及许多抗原活性保存较好。因为PLP中的过碘酸能氧化糖类，使其中的羟基转变为醛基，赖氨酸的双价氨基与醛基结合从而把抗原交联起来。

    因组织抗原绝大多数含蛋白质和糖类。而抗原表位一般位于蛋白部分。PLP能选择性地使糖类交联，这样既稳定了抗原，又不影响抗原表位与抗体的结合。加入低浓度的多聚甲醛则能稳定蛋白与脂类。但赖氨酸较贵，而多聚甲醛/戊二醛固定液相对经济简便，效果也较理想。