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生化实验室离心机操作事项
[2013/8/14]
生化实验室离心机操作事项
在实验过程中,欲使沉淀与母液分开,有过滤和离心两种方法。在下述情况下,使用离心方法较为合适。
(1)沉淀有粘性。
(2)沉淀颗粒小,容易透过滤纸。
(3)沉淀量过多而疏松。
(4)沉淀量很少,需要定量测定。
(5)母液粘调。
(6)母液量很少,分离时应减少损失。。
(7)沉淀和母液必须迅速分离开。
(8)一般肢体溶液。
离心机是利用离心力对混合溶液进行分离和沉淀的一种专用仪器。在此只介绍生物化学实验室使用的台式低速离心机和落地式低速离心机。
1.操作:
使用前应先检查变速旋钮是否在“0”处。外套管应完整不漏,外套管底部需放有橡皮垫。
(2)离心时先将待离心的物质转移到大小合适的离心管内,盛量不宜过多(占管的2/3体积),以免溢出。将此离心管放入外套管,再在离心管与外套管间加入缓冲用水。
(3)一对外套管(连同离心管)放在台称上平衡,如不平衡,可调整离心管内容物的量或缓冲用水的量。每次离心操作,都必须严格遵守平衡的要求,否则将会损坏离心机部件,甚至造成严重事故,应该十分警惕。
(4)将以上两个平衡好的套管,按对称方向放到离心机中,盖严离心机盖,并把不用的离心套管取出。
(5)开动时,先开电门,然后慢慢拨动旋钮,使速度逐渐增加。停止时,先将旋钮拨动到“0”,不继续使用时拔下插头,待离心机自动停止后,才能打开离心机盖并取出样品,绝对不能用手阻止离心机转动。
(6)用完后,将套管中的橡皮垫洗净,保管好。冲洗外套管,倒立放置使其干燥。
2.注意事项:
(1)离心过程中,若听到特殊响声,表明离心管可能破碎,应立即停止离心。如果管已破碎,将玻璃渣冲洗干净(玻璃渣不能倒入下水道),然后换新管按上述操作重新离心。若管来破碎,也需要重新平衡后再离心。
(2)有机溶剂和酚等会腐蚀塑料套管,盐溶液会腐蚀金属套管。若有渗漏现象,必须及时擦洗干净漏出的溶液,并更换套管。
(3)避免连续使用时间过长。一般大离心机用40分钟休息20或30分钟,台式小离心机用40分钟休息10分钟。
(4)电源电压应与离心机所需要的电压一致。接地线后,才能通电使用。
(5)一年应检查一次离心机内电动机的电刷与整流子磨损情况,严重时更换电刷或轴承。
做普通生化检查,分离血清时采用低速离心机,转速在3000—5000转左右。一般在3分钟之内就可以了。
在实验过程中,欲使沉淀与母液分开,有过滤和离心两种方法。在下述情况下,使用离心方法较为合适。
(1)沉淀有粘性。
(2)沉淀颗粒小,容易透过滤纸。
(3)沉淀量过多而疏松。
(4)沉淀量很少,需要定量测定。
(5)母液粘调。
(6)母液量很少,分离时应减少损失。。
(7)沉淀和母液必须迅速分离开。
(8)一般肢体溶液。
离心机是利用离心力对混合溶液进行分离和沉淀的一种专用仪器。在此只介绍生物化学实验室使用的台式低速离心机和落地式低速离心机。
1.操作:
使用前应先检查变速旋钮是否在“0”处。外套管应完整不漏,外套管底部需放有橡皮垫。
(2)离心时先将待离心的物质转移到大小合适的离心管内,盛量不宜过多(占管的2/3体积),以免溢出。将此离心管放入外套管,再在离心管与外套管间加入缓冲用水。
(3)一对外套管(连同离心管)放在台称上平衡,如不平衡,可调整离心管内容物的量或缓冲用水的量。每次离心操作,都必须严格遵守平衡的要求,否则将会损坏离心机部件,甚至造成严重事故,应该十分警惕。
(4)将以上两个平衡好的套管,按对称方向放到离心机中,盖严离心机盖,并把不用的离心套管取出。
(5)开动时,先开电门,然后慢慢拨动旋钮,使速度逐渐增加。停止时,先将旋钮拨动到“0”,不继续使用时拔下插头,待离心机自动停止后,才能打开离心机盖并取出样品,绝对不能用手阻止离心机转动。
(6)用完后,将套管中的橡皮垫洗净,保管好。冲洗外套管,倒立放置使其干燥。
2.注意事项:
(1)离心过程中,若听到特殊响声,表明离心管可能破碎,应立即停止离心。如果管已破碎,将玻璃渣冲洗干净(玻璃渣不能倒入下水道),然后换新管按上述操作重新离心。若管来破碎,也需要重新平衡后再离心。
(2)有机溶剂和酚等会腐蚀塑料套管,盐溶液会腐蚀金属套管。若有渗漏现象,必须及时擦洗干净漏出的溶液,并更换套管。
(3)避免连续使用时间过长。一般大离心机用40分钟休息20或30分钟,台式小离心机用40分钟休息10分钟。
(4)电源电压应与离心机所需要的电压一致。接地线后,才能通电使用。
(5)一年应检查一次离心机内电动机的电刷与整流子磨损情况,严重时更换电刷或轴承。
做普通生化检查,分离血清时采用低速离心机,转速在3000—5000转左右。一般在3分钟之内就可以了。
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